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      酵母基因組DNA提取試劑盒

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      M D L
      分子式
      分子量
      產品參數 產品簡介:

      本試劑盒采用可以特異性結合DNA的離心吸附柱和獨特的緩沖液系統,提取酵母基因組DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司特有新型材料,能夠高效專一吸附DNA,可最大限度去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物。提取的基因組DNA片段大,純度高,質量穩定可靠。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規操作,包括酶切、 PCR、文庫構建、Southern雜交等實驗。

      操作步驟:

      使用前請先在漂洗液中加入無水乙醇,加入體積請參照瓶體上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。

      1、取酵母細胞(不超過5×107 ce l1 s),12000rpm離心1min,盡量吸除上清。

      2、酵母細胞壁的破除:向酵母菌體中加入470ul山梨醇Buffer。充分懸浮菌體,加入25ul酵母破壁酶和5ul β-巰基乙醇,充分混勻。30℃處理1-2h,期間可顛倒離心管混勻數次。

      3、12000rpm離心lmin,棄上清,收集沉淀。

      4、向沉淀中加入200ul溶液A,充分懸浮沉淀,向懸浮液中加入20ul的RNase A(10mg/ml),充分顛倒混勻,室溫放置10min。

      5、加入20ul的蛋白酶K(10mg/ml),充分顛倒混勻。65℃水浴消化15-30min,消化期間可顛倒離心管混勻數次,直至樣品消化完全為止。

      6、加入200ul溶液B,再加入200ul無水乙醇,充分顛倒混勻,此時可能會出現絮狀沉淀,不影響DNA的提取,可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中,室溫放置2min。

      7、12000rpm離心2min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

      8、向吸附柱中加入600ul漂洗液(使用前請先檢查是否己加入無水乙醇)。12000rpm離心1min,棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

      9、向吸附柱中加入600ul漂洗液, 12000rpm離心l min, 棄廢液,將吸附柱放入收集管中。

      10、12000rpm離心2min,將吸附柱敞口置于室溫或50℃溫箱放置數分鐘,目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,否則漂洗液中的乙醇會影響后續實驗如酶切、PCR等。

      11、將吸附柱放入一個干凈的離心管中,向吸附膜中央懸空滴加50-200ul經65℃水浴預熱的洗脫液,室溫放置5min,12000rpm離心l min。

      12、離心所得洗脫液再加入吸附柱中,12000rpm離心2 min,即可得到高質量的基因組DNA。

      注意事項:

      1、樣品應避免反復凍融,否則會導致提取的DNA片段較小且提取量下降。

      2、若試劑盒中的溶液出現沉淀,可在65℃水浴中重新溶解后再使用,不影響提取效果。

      3、如果實驗中的離心步驟出現柱子堵塞的情況,可適當延長離心時間。

      4、洗脫緩沖液的體積最好不少于50ul,體積過小會影響回收效率;洗脫液的pH值對洗脫效率也有影響,若需要用水做洗脫液應保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調至此范圍), pH值低于7. 0會降低洗脫效率。DNA產物應保存在-20℃,以防DNA降解。

      5、 DNA濃度及純度檢測:得到的基因組DNA片段的大小與樣品保存時間、操作過程中的剪切力等因素有關。 回收得到的DNA片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測濃度與純度。DNA應在OD260處有顯著吸收峰,OD260值為1.0相當于大約50μg/ml雙鏈DNA、40μg/ml單鏈DNA。OD260/0D280比值應為1.7-1.9,如果洗脫時不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水,比值會偏低,因為pH值和離子存在會影響光吸收值,但并不表示純度低。
      性狀 試劑盒內容: 50T 100T
      RNase A 1m1 1ml×2
      蛋白酶K 1ml 1ml×2
      酵母破壁酶 1. 25m1 1.25m1×2
      β-巰基乙醇 300ul 600ul
      山梨醇Buffer 25m1 50m1
      溶液A 10ml 20ml
      溶液B 10ml 20ml
      漂洗液 15m1 15ml×2
      洗脫液 10m1 20m1
      吸附柱 50個 100個
      收集管 50個 100個
      說明書 1份 1份
      貯存 室溫(15℃-25℃) 干燥保存,復檢期12個月,2℃-8℃保存時間更長
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